转录组学揭示了一种菌株的耐酸性和产γ-氨基丁酸的不同代谢策略

转录组学揭示了一种菌株的耐酸性和产γ-氨基丁酸的不同代谢策略移动邮箱139登陆,dell官网首页,张丽大战黑人torrent, 作者：微生态 编译：微科盟艾奥里亚，编辑：微科盟茗溪、江舜尧。 微科盟微文，欢迎转发转载，转载须注明来源《微生态》公众号。 导读 背景：在人类的许多神经递质中，γ-氨基丁酸（GABA）显示

作者：微生态

编译：微科盟艾奥里亚，编辑：微科盟茗溪、江舜尧。

微科盟微文，欢迎转发转载，转载须注明来源《微生态》公众号。

导读

背景：在人类的许多神经递质中，γ-氨基丁酸（GABA）显示出具有改善几种心理健康指征（如压力和焦虑）的潜力。由于肠道内微生物分泌的GABA可影响宿主心理健康的预后，因此微生物-肠-脑轴是GABAergic能效的重要途径。了解肠道内微生物产生GABA的分子特征，可以为心理健康的新疗法提供见解。

结果：在添加谷氨酸钠（MSG）的典型合成生长培养基中，对3株具有同源性谷氨酸脱羧酶（GAD）操纵子的Levilactobacillus brevis的整体生长情况、谷氨酸利用和GABA产生进行了评价。Levilactobacillus brevis Lbr-6108™（Lbr-6108，之前称为L. brevis DPC 6108）和Levilactobacillus brevis Lbr-35™（Lbr-35）具有相似的生长特征，但在GABA分泌和耐酸性方面存在显著差异。Lbr-6108在生长期早期阶段就能够产生GABA，在生长达到稳定期后期产生的GABA显著高于Lbr-35和模式菌株Levilactobacillus brevis ATCC 14869。通过RNA测序我们鉴定了GABA产生过程中几个时间点的全基因表达情况。负责GABA产生和分泌的GAD操纵子，在发酵仅6 h后在Lbr-6108中被激活，并持续到整个稳定期。此外，Lbr-6108同时激活了许多不同的耐酸性机制，这赋予了其酸耐受性和能量的产生。相反，在遗传学上具有类似GAD操纵子的Lbr-35（包括GAD基因的两个拷贝），即使与MSG共同培养，也未表现出GAD操纵子的上调。

结论：本研究首次评价了Levilactobacillus brevis在不同生长期GABA产生过程中的全转录组变化。多种耐酸机制的共同表达揭示了人类共生菌之间的特殊生态位的代谢功能，并强调了GABA代谢在这一重要微生物物种中的复杂调节作用。此外，Lbr-6108增加和快速的GABA产生突出了该菌株作为治疗药物的潜力和筛选微生物效应分子输出的总体价值。

论文ID

原名：Tranomics reveal different metabolic strategies for acid resistance and gamma-aminobutyric acid（GABA）production in select Levilactobacillus brevis strains

译名：转录组学揭示了Levilactobacillus brevis的耐酸性和产γ-氨基丁酸（GABA）的不同代谢策略

期刊：Microbial Cell Factories

IF：5.328

发表时间：2021.9.6

通讯作者：Wesley Morovic

通讯作者单位：美国国际香精香料公司健康与生物科技部门（International Flavors &Fragrances, IFF Health and Biosciences）

DOI号：10.1186/s12934-021-01658-4

实验设计

结果

1Levilactobacillus Lbr-6108、Lbr-35和ATCC 14869的基因组分析显示GAD操纵子的同线性

Lbr-6108和ATCC 14869的总基因组大小分别为2,884,677 bp和2,473,148 bp。Lbr-35的新基因组草图为6个连续序列，总大小为2,338,793 bp，其中G + C含量为46.1%。Lbr-35基因组注释揭示了2,328个编码区、62个tRNA、15个rRNAs和15个间隔区的单个CRISPR重复间隔区阵列。利用所有公开的基因组进行系统发育学分析，我们发现了L. brevis的3个主要分支（图1A）。Lbr-6108和ATCC 14869均属于同一分支的粪便分离株，而Lbr-35处于单独的菌株群中。Lbr-35是一种商业益生菌，其分离来源尚不清楚，然而，它与L. brevis HQ1-1类群（分离自传统乳制品）最为相似。这3株L. brevis菌株共享了2,029个基因，Lbr-6108在额外的近500,000 bp的基因组区域中存在有697个独特基因。Lbr-6108和Lbr-35之间共享了38个基因，而Lbr-6108和ATCC 14869之间共享了261个基因（图1B）。较大的Lbr-6108基因组描述了一个或多个大质粒和许多独特的基因，如原噬菌体相关蛋白和从头脂肪酸生物合成的基因以及一些调节因子和磷酸转移酶摄取系统的基因。

已有的研究证明了L. brevis是唯一可编码两个GAD基因的菌株。事实上，本研究所涉及的三种L. brevis菌株都含有gadA和gadB的拷贝。gadB基因与转录调节因子（gadR）、谷氨酸/γ-氨基丁酸逆向转运蛋白（gadC）和谷氨酰-tRNA合成酶（gltX）共同存在于GAD操纵子中，而gadA基因是一个独立的基因（图1C）。整个GAD操纵子的成对核苷酸比对显示Lbr-6108与Lbr-35和ATCC 14869的同源性分别为99.0%和99.3%。未发现大的插入或缺失。当比较单个蛋白的氨基酸序列时，Lbr-6108与Lbr-35对gadR、gadC和gadB的氨基酸序列同源性为100.0%。采用相同比较方式对Lbr-6108和ATCC 14869和进行比较发现，gadR、gadC和gadB存在单一突变。Lbr-6108gadA蛋白序列与Lbr-35和ATCC 14869的同源性分别为98.9%和99.8%。在Lbr-6108中，预测了gadR直接上游基因间的三个启动子区域。Lbr-35中三个启动子区域中的两个的基因间序列具有高度多态性，这可能影响GAD操纵子的整体表达。

图1 Levilactobacillus brevis菌株中GAD操纵子的基因组比较。A代表基于500个核心蛋白所构建的L. brevis种属的系统发育树，其中发育树的每一枝右侧数值代表该分支的基因组大小。三个不同的分支以不同阴影进行着色；B以环状基因组图谱比较了三个菌株全基因组中蛋白的同源性，从内向外的环分别代表ATCC 14869、Lbr-35和Lbr-6108，中间的Venn图显示了三个菌株共享基因的数量。热图显示了双向最佳匹配（上）和单向最佳匹配（下）的蛋白质序列同一性百分比；C代表L. brevis中谷氨酸代谢基因的概述，包括典型的GAD操纵子和单独的gadA基因。

2 Lbr-6108在发酵早期即快速产生GABA

3个株菌均在De Man-Rogosa-Sharpe肉汤培养基中（MRS）或MRS +谷氨酸钠（MSG）中生长，培养基初始pH值在5.5～6之间。尽管ATCC 14869在48 h时的生物量低于Lbr-6108，但Lbr-6108与Lbr-35两种菌株在48时无明显差异（图2A-C，表S1）。ATCC 14869生长速率较慢与其低接种量之间不成比例（平均OD低于0.040）（表S1）。而Lbr-6108和Lbr-35的生长均在21 h时（T21）达到生长的稳定期（图2A，B），ATCC 14869在前24 h的生长比Lbr-6108和Lbr-35慢了大约5倍（基于OD的比较），随后ATCC 14869开始指数生长（图2C）。图2D显示了三种细菌在MRS和MRS + MSG中所有菌株的生长曲线。在任何时间点，培养物的pH值均未低于5，该pH范围在乳酸菌（lactic acid bacteria，LAB）中谷氨酸脱氢酶（GAD）的最适pH范围内。

图2 Levilactobacillus brevis菌株的微生物GABA产量和谷氨酸利用情况。基于液相色谱-质谱法测定无细胞培养物上清液中的GABA和谷氨酸含量，并以μg/mL为单位表示。GABA的检出线（LOD）为50 μg/mL，谷氨酸的检出线为100 μg/mL。A-C分别代表L. brevis菌株Lbr-6108（A），Lbr-35 （B）以及ATCC 14869（C）在10000 μg/mL谷氨酸钠存在与否的条件下，在整个培养周期内上清液中GABA的含量测定（左侧y轴），x轴代表不同时间点，右侧y轴代表600 nm处的OD值；D代表三个L. brevis菌株在10000 μg/mL MSG存在与否条件下在MRS培养基中的生长曲线比较。E代表Lbr-6108菌株在不同MSG浓度的条件下GABA的生成测定，其中条形图表示GABA产量（左y轴），而黑色菱形则表示产量的百分比（右y轴）。图中的符号和柱状图可能会掩盖误差线。

在MRS培养基中，我们在Lbr-6108培养6 h时就检测到了GABA的产生，其浓度可达66 µg/mL，在该菌株生长达到稳定期附近时（15 h）可检测到最大值产生量--520 µg/mL（图2A，表S1）。Lbr-6108产生的GABA与MRS中初始谷氨酸的快速消耗相关。谷氨酸盐初始浓度在650-700 µg/mL范围内（0.065-0.07%），前15 h可被Lbr-6108快速利用至100 µg/mL左右，从而显示有86.0%的谷氨酸转化为产生的GABA（图2A）。此外，在培养基中以谷氨酸钠的形式加入10,000 μg/mL（1.0%）游离谷氨酸底物后，Lbr-6108所产生的GABA含量有所增加（图2A）。与未添加谷氨酸的培养条件相比，谷氨酸的添加使得GABA的产生量在15 h时增加了2.5倍，在培养结束时（48 h），对培养基中过量的谷氨酸进行定量可以发现，有97.0%的谷氨酸被转化生成了GABA，产生了约10倍以上的GABA（图2A）。菌株利用谷氨酸的GAD酶活性在24 h时达到最大值，该时间点GABA的产生比21 h时增加了39.2%（图2A）。在MRS + MSG培养条件下，在培养48 h时，GABA的最终浓度为6,000 μg/mL，这与之前Lbr-6108的测量值相似。

我们通过在培养集中补充更多的底物（MSG），进一步探究了Lbr-6108利用谷氨酸产生GABA的生产能力。当培养基中谷氨酸的浓度从10,000 μg/mL（1%）增加到30,000 μg/mL（3%）甚至是90,000 μg/mL（9%）时，增加了Lbr-6108产生GABA的量。添加1.0%的MSG在48 h时产量约是24 h时的一倍，而3%和9% MSG添加量的产量分别比24 h时增加了243.0%和607.0%（表S2，图2E）。随后，尽管GABA的产生在72 h时仍在增加，但Lbr-6108似乎减弱了对谷氨酸盐的利用率。基于GABA产量与利用的谷氨酸之间的比值，我们计算了GABA的产率，通过比较我们发现，10,000 μg/mL MSG添加量的GABA产率普遍较高，并且随着培养时间的延长而持续增加（表S2，图2E）。24 h所有培养基条件下培养基的pH值为5（空白培养基pH 5.5-6），而48 h时，10,000 μg/mL MSG添加量的培养基的pH值仍保持在5左右，但此时30,000 μg/mL和90,000 μg/mL MSG添加量下培养基中的细菌培养物分别增加至7和8。对0 h、24 h和48 h时直接收获的细胞菌体进行菌株特异性PCR和16S测序，以确保收获的菌株为纯菌株。通过鉴定我们在Lbr-6108和Lbr-35之间未观察到污染现象（图S1）。

3 GABA产生的时间不是GAD操纵子存在所固有的

在MRS和MRS + MSG两种培养条件下，Lbr-6108是唯一在早期生长阶段（6 h）就能产生可检测到GABA含量的菌株（图2A）。在Lbr-35和ATCC 14869中，Lbr-35与Lbr-6108的生长曲线最相似，而ATCC 14869在相同的培养基中生长非常缓慢（图2D）。然而，Lbr-35在MRS培养基中在21-24 h时能够产生可检测到的GABA（80-82 µg/mL），到48 h时产量增加一倍（图2B）。在MRS + MSG培养条件下，Lbr-35产生的GABA没有急剧增加（图2B）。Lbr-35在MRS和MRS + MSG生长的稳定期至稳定后期的GABA浓度较低，其可归因于有效的谷氨酸利用（最大利用率为20.0%）（图2B）。对于ATCC 14869而言，其在MRS或MRS + MSG中的生长模式与Lbr-6108和Lbr-35明显不同，ATCC 14869产生的GABA与Lbr-35所产生的GABA相当，但仅在24-48 h之间才可观察到可检出的GABA（图2 C）。由于Lbr-6108和Lbr-35具有相似的生长特征，但具有不同的GABA产生能力，因此我们对这两种菌株进行了RNA测序。而本研究并没有对ATCC 14869进行测序，其原因是因为它较慢的生长模式有可能影响GAD操纵子的表达结果。

4 Lbr-6108在发酵早期表达GABA产生的基因

主成分分析中代表了两种菌株基因表达的趋势，其中同一菌株的重复样本多聚集在一起（图S2）。然而，对于在MRS + MSG培养条件下的Lbr-35菌株来说，其在6 h和12 h时各有一个样本聚集在一起，而并没有与各自的重复样本聚集在一起。在Lbr-6108中，18 h时的基因表达差异最大（表1）。对于该菌株来说，在MRS + MSG培养条件下，其18 h的样本与12 h的样本的基因表达更为相似，而在MRS培养条件下，其18 h的样本与24 h的样本更相似（图S2）。图3显示了Lbr-6108和Lbr-35在不同生长阶段的显著差异表达基因（DEGs）情况。一般而言，DEG的数量随着时间的推移而增加，与6 h相比，两种菌株在24 h时均观察到最大数量的DEGs（图3A-B）。无论是在MRS还是在MRS + MSG的培养条件下，在较早生长期（12 h与6 h相比），Lbr-6108均表现出比Lbr-35更多的DEGs（图3C–F）。再者，在Lbr-6108的对数生长中期（12 h），有14个基因在MRS + MSG中差异表达，而对Lbr-35来说，相同时间点MRS + MSG仅诱导了2个DEGs（图3E）Lbr-6108的14个基因由糖发酵的假想蛋白、转运蛋白和其他酶，以及吡哆醛-5′-磷酸（PLP）操纵子中的thiD2组成，这突出了菌株之间一般生长特性的细微表达差异，尽管他们具有相似的生长模式（图2A-B）。

图3 在整个实验过程中，Levilactobacillus brevis Lbr-6108和Lbr-35中的显著差异表达基因。A-B分别表示Lbr-6108（A）和Lbr-35（B）在不同培养条件下（MRS和MRS + MSG），在相同时间节点的差异表达基因数量的比较；C-D表示Lbr-6108（C）和Lbr-35（D）在仅MRS的培养条件下不同时间点的差异表达基因数量的比较；E-F表示Lbr-6108（E）和Lbr-35（F）在MRS+ MSG培养条件下下不同时间节点差异表达基因数量的比较。

虽然是在生长模式相似的时间点下进行取样，但GAD操纵子的调控在Lbr-6108和Lbr-35之间的差异很大（图4A，表S3）。对Lbr-6108中的12 h和6 h进行比较可以发现，gadB的基因表达倍数变化在MRS和MRS + MSG中分别显著增加了2.47倍和3.28倍（图4A）。而gadA表达在任何时间点之间都没有显著变化，这表明gadB是Lbr-6108中主要的谷氨酸脱羧酶（图4A）。gadB的表达在18 h时持续增加而在24 h时下降（图4A）。正如预期的那样，gadC基因在整个实验过程中表达的增加与gadB相似，其在MRS + MSG培养条件下的表达是MRS培养条件下表达的近两倍（图4A）。gadR在MRS培养条件下从12 h-18 h上调了几乎2倍，而在MRS + MSG培养条件下上调4倍以上（图4A）。重要的是，催化吡哆醛磷酸化形成PLP的thiD家族吡哆醛激酶基因thiD2的表达增加与GAD操纵子相似，证实了Lbr-6108产生GAD催化功能所需的辅因子PLP的能力（图4B）。有趣的是，RNA表达图谱表明，由于gadR、gadC、gadB和gltX具有相似的读段覆盖度，并维持在所有基因中，因此这些基因都是共转录的（图5A）。正是由于GAD操纵子的cDNA read覆盖开始于gadR上游的预测启动子区域，从RNA测序数据中我们观察到GAD操纵子预期的表达模式（图5B）。

图4 Levilactobacillus brevis Lbr-6108和Lbr-35中耐酸操纵子的基因表达。A中的缩写分别代表gadA--谷氨酸脱羧酶（EC 4.1.1.15），gadR--转录调节因子，gadC--谷氨酸/γ-氨基丁酸反向转运蛋白，gadB--谷氨酸脱羧酶（EC 4.1.1.15），gltX--谷氨酰-tRNA合成酶（EC 6.1.1.17；EC 6.1.1.24）；B中的缩写分别代表hmpT--预测羟甲基嘧啶ECF转运蛋白的底物特异性组分HmpT，thiD2--新型吡哆醛激酶thiD家族（EC 2.7.1.35），norD--吡哆醇代谢的转录调节因子/磷酸吡哆胺氨基转移酶（EC 2.6.1.54）；C中的缩写分别代表argF--鸟氨酸氨甲酰基转移酶（EC 2.1.3.3），arcA--精氨酸脱胺酶（EC 3.5.3.6），arcD--精氨酸/鸟氨酸反向转运蛋白；D中的缩写分别代表aguA--胍丁胺脱胺酶（EC 3.5.3.12），aguD--与胍丁胺分解代谢相关的胍丁胺/腐胺反向转运蛋白，aguB--腐胺氨甲酰基转移酶（EC 2.1.3.6）；E中的缩写分别代表mleP--苹果酸渗透酶，mleS，苹果酸乳酸酶（EC 4.1.1.101），mleR，苹果酸调节因子；F中的缩写分别代表nhaC2--NhaC家族预测酪氨酸转运体，tdcP--GadC家族预测酪氨酸转运体，tdcA--1-酪氨酸脱羧酶（EC 4.1.1.25），tyrS--酪氨酰-tRNA合成酶（EC 6.1.1.1）。

图5 Levilactobacillus brevis GAD操纵子中RNA表达的概述。A代表RNA测序读长覆盖度；B中橙色箭头代表 L. brevis GAD操纵子，灰绿色代表假定的启动子；C代表L. Brevis Lbr-6108、Lbr-35和ATCC 14869的DNA序列成对比较，其中绿色代表100%的同源性，黄色代表30-99%的同源性。灰色条中的黑线代表单个GAD操纵子序列的多态性。

由于GAD操纵子与Lbr-6108的高度同源性（图5C），这使得GAD操纵子的一些活性在Lbr-35中是可以预期的，但令我们惊讶的是，处理18 h和12 h时MRS培养条件下、以及18 h时MRS + MSG培养条件下gadA的表达有所下调外，从6 h-24 h期间并无其他显著改变（图4A）。在MRS培养基中无论是否额外添加MSG，Lbr-35中GAD操纵子的表达模式都未表现出差异。在MRS + MSG培养条件下或仅MRS培养条件下培养的Lbr-35中分别发现了18个（图3C）和51个（图3B）DEGs在菌株生长的对数中期（T12、T18和T24）的所有时间点差异表达。在这些DEGs中，胍丁胺脱胺酶途径中的基因，包括胍丁胺脱胺酶aguA（EC 3.5.3.12）和胍丁胺/腐胺反向转运蛋白aguD，在Lbr-6108和Lbr-35中均上调（图4C）。在Lbr-6108中，精氨酸脱胺酶操纵子在MRS和MRS + MSG中均仅在生长的24 h时高表达（图4D）。在MRS + MSG培养条件下培养18 h时，Lbr-6108中GAD操纵子的表达最高，而Lbr-35却显著表达多个噬菌体溶酶体相关基因、转运蛋白的基因和三个促聚集因子（表1）。

表1 在额外添加10000 μg/mL谷氨酸钠的MRS培养条件下，与6 h相比，18 h时Levilactobacillus brevisLbr-6108和Lbr-35中的前20个最高表达基因。

5 抗酸和能量生成的其他代谢途径与Lbr-6108中的GAD操纵子同时表达

在Lbr-6108中，MRS和MRS + MSG在对数中期（12 h）至静止期（24 h）之间分别有153和117个DEGs（图3）。在MRS中发现的这153个DEGs中，有一部分是高表达精氨酸脱胺酶操纵子的基因，其中包括精氨酸/鸟氨酸反向转运蛋白arcD、鸟氨酸氨甲酰基转移酶argF（EC 2.1.3.3）和精氨酸脱胺酶arcA（EC 3.5.3.6）（图4D）。已知苹果酸乳酸发酵可降低酸度，实际上，在Lbr-6108培养过程中的不同时间点，其苹果酸乳酸酶mleS基因也确实在增加（图4E）。在MRS和MRS + MSG培养条件下，苹果酸发酵操纵子的苹果酸渗透酶mleP在12 h时均轻微上调（图4E）。值得注意的是，在酪氨酸脱羧酶操纵子中，仅酪氨酰-tRNA合成酶基因tyrS表现出较高的诱导率，而在任何试验菌株或条件下的任何时间点均未诱导酪氨酸脱羧酶基因tdcA。此外，精氨酸脱胺酶通常被上调，其上调程度在两种培养基中相当（图4D）。重要的是，在MRS和MRS + MSG两种培养条件下，其上调的许多基因与Lbr-6108中不同的抗酸机制相关。一般而言，Lbr-6108中L-和D-乳酸脱氢酶基因未显著上调或下调，这表明培养物中有稳定的乳酸生成。

由于其中许多代谢基团参与酸性的耐受性调控，因此相比于Lbr-35，我们对Lbr-6108的耐酸性增加进行了测试。在活细胞计数前，将两种菌株暴露于酸化培养基不同时间。在pH=3的基础培养基中暴露3h后，尽管Lbr-6108的活细胞计数较初始浓度有所降低（< 1.0%），但并未表现出统计学差异。相反，在相同的暴露参数下，Lbr-35活细胞下降明显（图6）。进一步，我们使用不含碳水化合物的盐基培养基以探究耐酸性是否是由于基础培养基中碳水化合物、氨基酸、肽或其他营养物质的摄取增加所致。我们发现，尽管Lbr-6108的活细胞数量显著高于Lbr-35，但在相同pH强度下的盐水培养基中暴露时，两种菌株均出现显著的情况（图6）。这表明Lbr-6108通过代谢碳水化合物诱导了其耐酸性。

图6 Levilactobacillus Brevis Lbr-6108和Lbr-35稳定期培养物的耐酸性评估。所有细菌培养物在37 °C下过夜生长至稳定期，随后立即评估培养液中活细胞数量，随后在暴露于酸性环境2 h和3 h后再次测定其活细胞数量。柱状图代表4次生物性重复的平均值，误差线代表标准误差。****代表在0.0001水平上具有显著差异。

讨论

虽然GABA在菠菜、大麦和豆芽（300-720 nmol/g干重）等植物性食物中相对丰富，但基于某些安慰剂对照研究可以发现，含有GABA的食物不能满足消费者的需求。对过去使用天然或生物合成GABA的临床试验的系统回顾表明，有效剂量的应力减低在2.01-100 mg范围内，而并非一个标准值，较低剂量影响自主标记物，较高剂量影响中枢标记物，并且为了达到疗效，需要延长摄入而不是单次给药。这强调了可定期食用的GABA安全来源的重要性。包括LAB在内的微生物是GABA的重要来源，LAB中（如乳酸杆菌）GABA的产生能力因种属和菌株而异。最近已分离出高产GABA的乳酸杆菌菌株，可满足消费者需求。本研究中，我们试图在Levilactobacillus brevis中进一步探究产GABA的菌株特异性机制。

生长实验表明，Lbr-6108在发酵过程中比其他两个供试菌株更早开始产生GABA。诸多研究表明，GABA产生的最佳时间是在生长数天后，通常至少需要48 h。本研究中，Lbr-35和ATCC-14869仅在24-48 h即可产生大量的GABA。GABA的增加与实验中谷氨酸浓度的降低相一致。MRS中（生长实验中使用的合成培养基）固有的谷氨酸浓度与谷氨酸的平均日摄入量相似（肉食者、鱼肉食者、素食者和纯素食者约为15 g）。MSG作为是谷氨酸的钠盐，在商业中广泛应用，其在美国和欧洲的平均每日消耗量约为0.6 g（0.3-2.0 g/天），是东亚和东南亚国家的2-3倍。谷氨酸盐作为兴奋性神经递质发挥作用，但过量的谷氨酸盐可能导致其结合的细胞内兴奋反应增加，从而在称为“兴奋性毒性”的过程中导致细胞死亡。在实际生活中，欧盟所规定其食品中的谷氨酸的终浓度不应超过10 g/kg。因此，尽管谷氨酸钠有益于食品工业，但这种食品添加剂的普遍使用可能对公共卫生产生有害的后果。由于平均健康成人的平均胃肠道通过时间约为30 h，因此Lbr-6108中GAD操纵子的快速激活可能允许饮食中的谷氨酸钠在体内有益地转化形成GABA。

生长和RNA测序实验证实，与具有相似生长模式的菌株或具有同源性GDA操纵子的其他两种菌株相比，Lbr-6108能够产生更多的GABA，并且其GAD操纵子相应的上调。Lbr-35被用作阴性对照来评估最近综述的各种转录组策略，这些策略可以用于解释GABA产生的差异。两种GAD基因在L. brevis中的同时表达会增加GABA的产生，但只有gadB基因在Lbr-6108中表现出不同的表达。最近的一项研究表明，中国清香型白酒中分离出的L. brevis分离株，其GABA产生的增加可部分归因于gadR基因的过表达。同样，增加gadC的表达允许更多的底物从细胞外环境转入到细胞内。此外，PLP操纵子的上调确保了足够的辅因子可用于脱羧过程。GAD操纵子中基因在Lbr-6108中的表达随着谷氨酸浓度和时间的推移而波动。对于这些假设中的任何一个进行评估都可用于解释为什么Lbr-6108比Lbr-35具有更多的产GABA能力，但却无法解释Lbr-35与Lbr-6108差异如此之大是直接遗传或转录组所导致的。即使外加补偿谷氨酸钠，在Lbr-35培养过程中，其GAD操纵子的表达也没有增加，gadA在Lbr-6108或Lbr-35的任何条件下都没有改变表达。这两种菌株均没有gabT同源物，尽管整体序列具有同源性，但gltX仅在Lbr-6108中增加。有趣的是，在仅MRS的培养条件下这两种菌株中PLP操纵子中thiD2基因的表达相似，但在加入谷氨酸钠后，Lbr-6108菌种中PLP操纵子中thiD2基因的表达显著增加。未来的研究直接定量L. brevis中的PLP将有助于进一步分析其转录影响。在Lbr-6108的GAD操纵子上游鉴定出一个假定的启动子区域可以增加GAD操纵子的表达，但还需要进一步的分析。综上，这强调了乳酸杆菌中GABA整体调控的复杂性。

RNA测序也揭示了Lbr-6108中与GAD操纵子同时激活了其他几个耐酸途径。尽管在实验中我们测定了pH值变化，以确保菌株保持在产GABA的最佳pH范围内，但进一步的实验应考虑到人体肠道内的pH水平，这可能揭示巨大的转录效应。然而，GABA的快速产生伴随着其他几种耐酸机制的激活，包括精氨酸脱胺过程和苹果酸发酵过程。这些过程不仅对耐酸性很重要，而且对能量的产生同样重要。人们很容易推测，从婴儿粪便菌群中分离出来的Lbr-6108，代表了复杂的婴儿肠道菌群，习惯于能量和底物清除，因此它在生长期早期或静止期激活了多种策略，例如精氨酸操纵子。另一方面，正是由于GABA被证明是不可培养的人类微生物的必需生长因子，这可能有助于增加婴儿微生物群中的共生生物的生长。相反，Lbr-35可能习惯于在资源有限的食物环境条件下进行调控，只会在严重的酸应激或能量饥饿时产生过量的GABA。但目前仍需要进一步的实验来评估GABA的产生作为一组不同资源获取策略副产物的这一假设。

尽管Lbr-35与Lbr-6108具有相似的生长模式，但在对生长培养基中谷氨酸盐的响应方面，这两种菌表现出出相当大的差异。最近的研究表明，L. brevis中GABA的产生并不取决于其最佳的生长条件，不同的碳水化合物可能会增加Lbr-35中GABA的产生。本研究中我们发现，在MRS培养基中，无论是否存在MSG，Lbr-35中GAD操纵子中的基因都没有显著表达。在Lbr-35 RNA测序中所发现的上调的抗酸代谢途径仅是胍丁胺代谢，其在加入10,000 μg/mL MSG后代谢增加。胍丁胺与GABA一样，是细菌使用的替代氮源，也是腐胺的前体，腐胺是葡萄酒中含量最丰富的生物胺。此外，Lbr-35表达与应激反应的基因相关，这些基因包括促聚集因子（APFs），这是一个已被证明是益生菌乳酸杆菌的理想特征的，其有助于竞争性排除病原体。此外，APFs的上调对于生物膜的形成很重要，有助于胃/小肠液的存活和与上皮细胞的粘附。这意味着Lbr-35激活了对发酵胁迫的替代反应，这些激活的胁迫反应聚焦于聚集和生物膜形成，而非Lbr-6108中的营养代谢和去酸化反应。虽然GABA产生的菌株特异性策略是许多研究的主旨，但低GABA产生菌株的功能分析也值得进一步研究。

像Lbr-6108这样能够快速并增加GABA产生的微生物对宿主微生物-肠-脑轴具有益处。已有研究证明了肠道微生物在大脑的正常发育发育、功能、生理和行为中具有十分重要的作用。事实上，产GABA的齿双歧杆菌ATCC 27678（Bifidobacterium dentium ATCC 27678）降低了大鼠的内脏的超敏反应。已有的的研究表明，产生GABA的鼠李糖乳杆菌JB-1（Lacticaseibacillus rhamnosus JB-1）能够通过调节GABAergic系统降低脑中应激诱导的生物标志物。有趣的是，在迷走神经切断术后，对焦虑相关行为的影响停止，这表明微生物产生的GABA通过迷走神经介导了对大脑的直接影响。除了对应激相关行为和脑功能的影响外，微生物GABA的产生还与记忆和睡眠质量的改善相关。由于许多使用典型益生菌物种的研究显示了与肠-脑轴相关的益处，而在这些研究中并没有关注到GABA的作用，这表明沿着微生物-肠-脑轴的交流不仅是由微生物-GABA产生介导所导致的。筛选新型益生菌的最佳效应因子功能可以增加健康益处的可能性和影响。事实上，Lbr-6108针对其他肠道细菌分离株进行了高GABA输出筛查，并在体外和啮齿类动物中显示出多种健康获益。在基因组修饰尚未被广泛采用的应用中，天然产生大量的效应分子（如GABA）并被认为是安全的，同时也是生物体补充溶液的主要候选者。

结论

在本研究中，生理相关实验室条件下的RNA测序被用来评估GABA产生的整体调控。这揭示了Levilactobacillus brevis GAD操纵子的转录并不仅仅取决于gadR的存在，由于具有相似GAD操纵子序列的菌株在相同条件下不会产生GABA。因此，高GABA产生，特别是在生长期早期，被证实具有菌株特异性。在确定了Lbr-6108的高产GABA能力后，有必要进一步探究微生物对大脑功能和行为的影响。此外，还需要更稳健的临床试验来确定补充产GABA的细菌菌株（如Lbr-6108）是否可以干扰由GABA能信号介导的行为，如压力和焦虑。开发像Lbr-6108这样的菌株作为心理生物来调节神经兴奋-抑制平衡、调节情绪、认知功能、学习和记忆过程，可能有希望作为心理健康管理的补充补救措施。

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